單克隆抗體制備完成后,若需進行人源化改造以降低免疫原性,改造前需獲取抗體的哪些關鍵信息(如可變區序列),常用的改造技術有哪些?
日期:2025-09-03 09:37:30
在單克隆抗體人源化改造前,需獲取抗體可變區(V區)完整序列、親本抗體結合表位與親和力數據等核心信息,這些是確保改造后抗體保留活性、降低免疫原性的基礎;常用改造技術則以 “框架區(FR)替換” 和 “表位保留優化” 為核心,包括 CDR 移植、表面重塑、鏈替換等,需結合靶點特性選擇適配方案。
一、人源化改造前必須獲取的關鍵信息
人源化的本質是 “保留抗體特異性結合能力(依賴抗原結合區),替換異源序列(主要是框架區)以降低人體免疫識別”,因此需優先明確以下 4 類信息:
1. 抗體可變區(V?/V?)完整序列(核心中的核心)
需獲取的具體序列:重鏈可變區(V?)和輕鏈可變區(V?)的全長氨基酸序列(或對應的基因序列),包括:
互補決定區(CDR):共6個(V?的 CDR1/2/3、V?的CDR1/2/3),是直接與抗原結合的關鍵區域,必須 100% 精準保留(除非后續需微調親和力)。
框架區(FR):共4個(V?的FR1/2/3/4、V?的FR1/2/3/4),是支撐CDR構象的 “骨架”,也是人源化改造的主要替換區域,需明確親本抗體(如鼠源、兔源)的 FR 序列以匹配人源 FR 模板。
獲取方式:通過雜交瘤細胞測序(針對傳統雜交瘤單抗)、噬菌體展示庫篩選后測序(針對重組單抗),或直接由前期制備服務商提供測序報告。
2. 親本抗體的結合特性數據
抗原結合表位信息:明確抗體結合的是抗原的線性表位(氨基酸連續序列)還是構象表位(氨基酸空間折疊結構)—— 構象表位抗體的人源化需更謹慎,避免FR替換破壞CDR的空間構象。
親和力與特異性數據:需提供親本抗體與抗原的親和力(如Kd值,通過SPR、BLI 等技術檢測)、與同源蛋白的交叉反應性——人源化后需以此為標準,驗證抗體活性是否保留(通常要求親和力下降不超過10倍)。
3. 抗體的結構信息(可選但推薦)
若有親本抗體的晶體結構(如通過X射線衍射、冷凍電鏡解析)或同源建模結構,可直觀看到CDR與FR的空間相互作用,精準定位需保留的 FR “關鍵殘基”(部分FR殘基可能間接影響 CDR構象,需避免替換),降低改造失敗率。
4. 抗體的恒定區(C區)信息
明確親本抗體的恒定區來源(如鼠IgG1、兔IgG2)和亞型 —— 人源化時通常會將異源恒定區替換為人源恒定區(如人IgG1、IgG4,根據治療需求選擇,如 IgG4 適合需降低ADCC/CDC效應的場景),需提前確定目標人源恒定區亞型。

二、常用的人源化改造技術(按應用場景分類)
不同技術的核心邏輯均為 “最大化替換異源FR序列,最小化影響CDR結合活性”,具體選擇需結合抗體來源(如鼠源、兔源)、表位類型和改造目標(如低免疫原性、高穩定性)。
| 改造技術 | 核心原理 | 優勢 | 適用場景 | 典型案例/注意事項 |
| CDR移植技術(最主流) | 將親本抗體的6個CDR “移植” 到預先篩選的人源抗體FR框架上,僅保留CDR區域的異源序列 | 免疫原性降低最顯著,符合人體免疫系統識別習慣 | 絕大多數單抗(尤其是鼠源單抗),適合線性表位和構象表位 | 需篩選 “匹配度高” 的人源FR模板(如從人抗體數據庫中選同源性≥60%的FR),避免CDR構象改變 |
| 表面重塑技術(局部改造) | 僅替換異源FR表面的 “免疫原性殘基”(即易被人體T細胞、B細胞識別的氨基酸),不改變 FR 內部骨架 | 對 CDR 構象影響小,易保留抗體活性 | 構象表位抗體、親和力敏感型抗體(避免CDR移植破壞活性) | 需通過計算機預測(如免疫原性預測工具IEDB)定位免疫原性殘基,改造后需驗證免疫原性 |
| 鏈替換技術 | 將親本抗體的一條鏈(如輕鏈)直接替換為人源輕鏈,僅對另一條鏈(如重鏈)進行局部改造 | 操作簡單,周期短,適合快速驗證 | 輕鏈FR對CDR構象影響較小的抗體,或資源有限的初期改造 | 需篩選與人源輕鏈匹配的重鏈,避免鏈間相互作用異常導致聚集 |
| 鑲邊改造技術(“CDR移植+局部優化”) | 在CDR移植基礎上,保留親本抗體FR中 “可能影響CDR構象的關鍵殘基”(如與CDR直接作用的氨基酸) | 平衡免疫原性與活性,降低改造失敗率 | FR殘基對CDR構象影響較大的抗體(如兔源單抗) | 需通過結構分析或定點突變驗證 “關鍵殘基”,避免過度保留異源序列導致免疫原性回升 |
| 人源化定點突變(輔助優化) | 對CDR移植/表面重塑后的抗體進行單點或多點突變,優化FR與 CDR的相互作用、抗體穩定性 | 解決改造后親和力下降、穩定性差的問題 | 人源化后活性不達標的抗體,或需提升熱穩定性、抗降解性的場景 | 通常針對FR的 “框架殘基” 或CDR的 “非關鍵結合殘基”,避免突變破壞抗原結合位點 |
三、改造后的關鍵驗證指標(確保合規性與有效性)
人源化改造后需通過以下檢測,確認是否滿足后續研發(如臨床前研究)需求:
免疫原性驗證:通過 T 細胞增殖實驗、抗體依賴性細胞介導的細胞毒性(ADCC)檢測、人體抗鼠抗體(HAMA)/人抗人源化抗體(HAHA)檢測,確認免疫原性降低至目標水平(如HAHA 陽性率<10%)。
活性與親和力驗證:通過ELISA、SPR、BLI等技術,對比改造前后抗體的抗原結合活性(如 EC50 值)和親和力(Kd 值),確保活性保留率≥80%,親和力下降不超過 10 倍。
理化性質驗證:檢測抗體的熱穩定性(如Tm值,通過DSC檢測)、pH 穩定性、溶解度和聚集率(如SEC-HPLC檢測單體含量≥95%)——避免改造后抗體易降解、聚集,影響生產和儲存。
結構完整性驗證:通過 SDS-PAGE、質譜(MS)檢測抗體的分子量、糖基化修飾(如人源化抗體的糖基化需符合人源細胞表達特征),確認無異常降解或修飾。
若能提供親本抗體的可變區序列來源(如鼠源/兔源) 和目標應用場景(如科研檢測/臨床治療) ,我可以進一步幫你分析適配的改造技術路線,并整理關鍵殘基預測、人源 FR 模板篩選的具體方法。






